Penicillaminum
1998
Penicilamin
C5H11NO2S | Mr 149,21 | CAS 52-67-5 |
Je to kyselina (S)-2-amino-3-merkapto-3-methylmáselná. Počítáno na vysušenou látku, obsahuje 98,0 % až 101,0 % sloučeniny C5H11NO2S.
Vlastnosti
Bílý nebo téměř bílý krystalický prášek. Je snadno rozpustný ve vodě, těžce rozpustný v lihu 96%, prakticky nerozpustný v etheru.
Zkoušky totožnosti
Základní sestava zkoušek: A, B a D.
Alternativní sestava zkoušek: A, C a D, viz Obecné zásady (1.2.).
Zkoušený roztok. 10 mg se rozpustí ve 4 ml vody R.
Porovnávací roztok. 10 mg penicilaminu CRL se rozpustí ve 4 ml vody R.
Na vrstvu se nanese odděleně po 2 µl obou roztoků a vyvíjí se směsí objemových dílů vody R, kyseliny octové ledové R a 1-butanolu R (18 + 18 + 72) po dráze 10 cm. Vrstva se suší 5 min až 10 min při 100 °C až 105 °C a na 5 min až 10 min se vystaví působení par jodu. Hlavní skvrna na chromatogramu zkoušeného roztoku odpovídá polohou, zbarvením a velikostí hlavní skvrně na chromatogramu porovnávacího roztoku.
Zkoušky na čistotu
Roztok S. 2,5 g se rozpustí ve vodě prosté oxidu uhličitého R a zředí se jí na 25 ml.
Vzhled roztoku. Roztok S je čirý (2.2.1) a není zbarven intenzívněji než nejpodobnější porovnávací barevný roztok intenzity 6 (2.2.2, Metoda II).
Hodnota pH (2.2.3). 4,5 až 5, 5; měří se 1 ml roztoku S zředěného vodou prostou oxidu uhličitého R na 10 ml.
Specifická optická otáčivost. -61,0° až -65,0°, počítáno na vysušenou látku. Měří se roztokpřipravený rozpuštěním 0,500 g v hydroxidu sodném 1 mol/l RS a zředěným stejným rozpouštědlem na 10 ml.
Penicilamindisulfid. Stanoví se kapalinovou chromatografií (2.2.29).
Zkoušený roztok. 40 mg se rozpustí v mobilní fázi a zřeďí se jí na 10, 0 ml.
Porovnávací roztok (a). 40 mg penicilaminu CRL se rozpustí v mobilní fázi a zřeďí se jí na 10,0 ml.
Porovnávací roztok (b). 20 mg penicilaminu CRL se rozpustí v mobilní fázi a zředí se jí na 50,0 ml. 1,0 ml tohoto roztoku se zřeďí mobilní fází na 10,0 ml.
Chromatografický postup se obvykle provádí za použití:
Na chromatogramu zkoušeného roztoku není plocha píku odpovídajícího penicilamindi sulfidu větší než plocha odpovídajícího píku na chromatogramu porovnávacího roztoku (b) (1,0 %).
Látky absorbující v ultrafialovém světle. 0,100 g se rozpustí ve vodě R a zředí se jí na 50,0 ml. Absorbance (2.2.25) tohoto roztoku měřená při 268 nm není větší než 0,07 (asi 0,5 % kyseliny penilové).
Těžké kovy (2.4.8). 12 ml roztoku S vyhovuje limitní zkoušce A na těžké kovy (20 μg/g). K přípravě porovnávacího roztoku se použije základní roztok olova (2µg Pb/ml).
Rtut'. Nejvýše 10 µg Hg/g; stanoví se atomovou absorpční spektrometrií (2.2.23, Metoda I).
Zkoušený roztok. K 1,00 g se přidá 10 ml vody R a 0,15 ml kyseliny chloristé R a krouživým pohybem se zcela rozpustí. Přidá se 1,0 ml roztoku pyrrolidinyldithiokarbaminanu amonného R (10 g/l), který byl těsně před použitím třikrát promyt vždy stejným objemem isobutylmethylketonu R. Promíchá se a přidají se 2,0 ml isobutylmethylketonu R a 1 min se třepe. Pak se směs zředí vodou R na 25,0 ml a vrstvy se nechají oddělit. Použije se isobutylmethylketonová vrstva.
Porovnávací roztoky. Rozpustí se množství oxidu rtutňatého R odpovídající 0, 108 g Hg0 v co nejmenším objemu kyseliny chlorovodíkové zředěné RS a zředí se vodou R na 1000,0 ml (100 µg Hg/ml). Připraví se porovnávací roztoky stejným způsobem jako zkoušený roztok, avšak namísto zkoušené látky se použijí vhodné objemy roztoku obsahujícího 100 µg Hg/ml.
Změří se absorbance při 254 nm za použití rtuťové lampy s dutou katodou jako zdroje záření a plamene vzduch-acetylen. Přístroj se nastaví na nulu za použití isobutylmethylketonové vrstvy získané postupem popsaným při přípravě zkoušeného roztoku bez zkoušené látky.
Penicilin. Všechny postupy se provádějí v atmosféře prosté penicilinu a se zařízením používaným pouze pro tuto zkoušku. Zařízení se sterilizuje 3 h při 180 °C a tlumivé roztoky se sterilizují před použitím 20 min při 121 °C.
Zkoušený roztok (a). 1,000 g se rozpustí v 8 ml tlumivého roztoku o pH2,5, přidá se 8 ml etheru R a 1 min se intenzívně třepe. Extrakce se opakuje a etherové vrstvy se spojí. Pak se přidá 8 ml tlumivého roztoku o pH 2, S, 1 min se protřepává, nechá se ustát a kvantitativně se odděli horní vrstva, přičemž se zcela odděli vodná fáze (penicilin je nestálý při pH 2, S; operace se provádějí při tomto pH během 6 min až 7 min). Přidá se 8 ml tlumivého roztoku fosforečnanového o pH 6,0 (2), třepe se 5 min, nechá se ustát, oddělí se vodná vrstva a ověří se, že hodnota pH j e 6,0.
Zkoušený roztok (b). Ke 2 ml zkoušeného roztoku (a) se přidá 20 µl penicilinasy RS a inkubuje se 1 h při 37 °C.
Porovnávací roztok (a). 5 mg benzylpenicilinu sodné soli R se rozpustí v 500 ml tlumivého roztoku fosforečnanového o pH 6,0 (2). 0,25 ml tohoto roztoku se zředí tlumivým roztokem o pH2,5 na 200,0 ml a provede se extrakce za použití 8 ml tohoto roztoku, jak je popsáno pro Zkoušený roztok (a).
Porovnávací roztok (b).Ke 2 ml porovnávacího roztoku (a) se přidá 20 µl penicilinasy RS a inkubuje se 1 h při 37 °C.
Porovnávací roztok (c). Připraví se kontrolní roztok způsobem popsaným pro zkoušený roztok (a) bez zkoušené látky (slepá zkouška).
Připraví se vhodná živná půda, např. taková, jaká je popsána níže, a naočkuje se při vhodné teplotě kulturou mikroba Micrococcus flavus (ATCC 9341). Výsledná koncentrace by měla být 5 . 104 mikroorganismů v mililitru nebo jiné množství, je-li to třeba, aby byla získána požadovaná citlivost a tvorba jasně definovaných inhibičních zón vhodného průměru. Naočkovaná půda se ihned naleje do pěti Petriho misek o průměru 10 cm, aby vznikly vrstvy tloušťky 2 mm až 5 mm. Půda může být též složena ze dvou vrstev, přičemž je naočkovaná pouze horní vrstva. Misky se uchovávají tal~, aby před použitím se neprojevil žádný růst nebo úhyn mikroorganismů a aby povrch živné půdy byl v době použití suchý. Do každé misky se dá pět nerezových dutých válečků o průměru 6 mm na povrchu agaru rovnoměrně rozmístěných v kruhu s poloměrem asi 25 mm a soustředně s miskou. Na každou misku se dá do oddělených válečků 0,15 ml zkoušených roztoků (a) a (b) a porovnávacích roztoků (a), (b) a (c). Misky se udržují alespoň 24 h při 30 °C. Pak se změn průměry inhibičních zón s přesností alespoň 0,1 mm. Zkoušku lze hodnotit, jestliže porovnávací roztok (a) vykazuje čistou inhibiční zónu a nedávají-li porovnávací roztoky (b) a (c) žádné inhibiční zóny. Pokud zkoušený roztok (a) vykazuj e inhibiční zónu, j e způsobena penicilinem tehdy, jestliže zkoušený roztok (b) nevykazuje inhibiční zónu. Je-li tomu tak, průměrná velikost inhibičních zón, která je nalezena u zkoušeného roztoku (a) pro pět Petriho misek, je menší než průměrná velikost inhibičních zón, které vykazuje porovnávací roztok (a) (0,1 µg/g).
Živná půda (pH 6,0)
pepton | 5,0 g |
kvasnicový výtažek | 1,5 g |
masový výtažek | 1,5 g |
chlorid sodný | 3,5 g |
agar | 15,0 g |
voda destilovaná R | 1000,0 ml |
Ztráta sušením (2.2.32). Nejvýše 0,5 %; 1,000 g se suší nad oxidem fosforečným R při 60 °C a při tlaku nepřevyšujícím 670 Pa.
Síranový popel (2.4.14). Nejvýše 0, 1 %;stanoví se s 1,00 g zkoušené látky.
Stanovení obsahu
0,1000 g se rozpustí v 30 ml kyseliny octové bezvodé R a titruje se kyselinou chloristou 0,1 mol/l VS za potenciometrické indikace bodu ekvivalence (2.2.20).
1 ml kyseliny chloristé 0,1 mol/l VS odpovídá 14,92 mg C9H11NO2S.
Uchovávání
V dobře uzavřených obalech.
Separandum.
Nečistoty